一、百螢Annexin V, FITC標(biāo)記參數(shù):
Ex(nm) | 491 |
Em(nm) | 516 |
分 子 量 | ~36000 |
存儲(chǔ)條件 | 在-15℃以下保存,避免光照 |
溶 劑 | Water |
二、百螢 Annexin V, FITC標(biāo)記原理及作用
Annexin V, FITC標(biāo)記是一種模聯(lián)蛋白膜聯(lián)蛋白,膜聯(lián)蛋白是在鈣存在下與磷脂膜結(jié)合的蛋白質(zhì)家族。膜聯(lián)蛋白V是研究細(xì)胞凋亡的有用工具。它被用作探針以檢測(cè)在細(xì)胞表面上表達(dá)磷脂酰絲酸的細(xì)胞,這是細(xì)胞凋亡中發(fā)現(xiàn)的特征以及其他形式的細(xì)胞死亡。有多種參數(shù)可用于監(jiān)測(cè)細(xì)胞活力。膜聯(lián)蛋白V-染料結(jié)合物廣泛用于通過(guò)測(cè)量磷脂酰絲酸(PS)的易位來(lái)監(jiān)測(cè)細(xì)胞凋亡。在細(xì)胞凋亡中,PS被轉(zhuǎn)移到質(zhì)膜的外部小葉。磷脂酰絲酸在細(xì)胞表面上的出現(xiàn)是細(xì)胞凋亡的初始/中間階段的通用指示,并且可以在觀察到形態(tài)變化之前檢測(cè)到。該熒光FITC-膜聯(lián)蛋白V綴合物廣泛用于通過(guò)流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡監(jiān)測(cè)細(xì)胞凋亡。
三、百螢 Annexin V, FITC標(biāo)記實(shí)驗(yàn)方案
操作步驟
1.用膜聯(lián)蛋白V綴合物制備和孵育細(xì)胞:
1.1 制備膜聯(lián)蛋白V綴合測(cè)定緩沖液:10mM HEPES,140mM l和2.5mM CaCl2,pH 7.4。
1.2 用測(cè)試化合物處理細(xì)胞一段時(shí)間(用星形孢菌素處理的Jurkat細(xì)胞4-6小時(shí))以誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。
1.3 離心細(xì)胞,得到1-5×10 5個(gè)細(xì)胞/管。
1.4 將細(xì)胞重懸于200μLAnnexin V綴合測(cè)定緩沖液中(來(lái)自步驟1.1)。
1.5 在細(xì)胞中加入2μL膜聯(lián)蛋白V綴合物。
可選:在細(xì)胞內(nèi)加入死細(xì)胞染色劑如碘化丙錠,用于死細(xì)胞。
1.6 在室溫下進(jìn)行30至60分鐘,避光。
1.7 在用流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡分析細(xì)胞之前,加入300μLAnnexin V綴合測(cè)定緩沖液(來(lái)自步驟1.1)以增加體積(參見(jiàn)下面的步驟1.8)。
1.8 使用流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡檢測(cè)熒光強(qiáng)度(參見(jiàn)下面的步驟2或3)。
2.使用流式細(xì)胞儀分析:
通過(guò)使用具有適當(dāng)濾波器的流式細(xì)胞儀來(lái)量化膜聯(lián)蛋白V綴合物。
注意:對(duì)貼壁細(xì)胞的膜聯(lián)蛋白V結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)分析未經(jīng)過(guò)常規(guī)測(cè)試,因?yàn)樵诩?xì)胞分離過(guò)程中可能會(huì)發(fā)生特定膜損傷。
3.使用熒光顯微鏡分析:
3.1 吸取步驟1.6中的細(xì)胞懸液,用膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(步驟1.1)沖洗1-2次,然后用膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(步驟1.1)重懸細(xì)胞。 將細(xì)胞添加到載玻片上并蓋上蓋玻片。
注意:對(duì)于貼壁細(xì)胞,建議直接在蓋玻片上培養(yǎng)細(xì)胞。 與膜聯(lián)蛋白V結(jié)合物孵育后(步驟1.6),用膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(來(lái)自步驟1.1)沖洗1-2次,然后將膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(來(lái)自步驟1.1)加回到蓋玻片上。 將蓋玻片倒在載玻片上并使細(xì)胞可視化。 與膜聯(lián)蛋白V綴合物一起孵育后,也可以將細(xì)胞固定在2%甲醛中,并在顯微鏡下觀察。
3.2 在熒光顯微鏡下用適當(dāng)?shù)臑V光片分析膜聯(lián)蛋白V綴合物的凋亡細(xì)胞。
詞條
詞條說(shuō)明
百螢 鏈霉親和素偶聯(lián)物AF594標(biāo)記光普特性
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